RECOLECCIÓN I CULTIVO DE MUESTRAS
Dra. Noemí del Castillo.
El éxito de los procedimientos bacteriológicos depende en gran medida del modo como se obtienen las muestras i de la rapidez con que las mismas llegan al laboratorio. Estos procedimientos quedan inutilizados muchas veces por falta de cuidado i métodos defectuosos usados en la recolección i el manejo de las muestras. Deben seguirse estas reglas:
1.- Marcar todas las muestras con el nombre del paciente, fecha, persona que tomo la muestra. Nombre i edad del paciente, Número de cuarto o sala, naturaleza de la muestra i sitio de donde se obtuvo, diagnóstico clínico i duración de la enfermedad, i prueba requerida.
2.- Obtener en lo posible muestras antes de administrar antibióticos a agentes antimicrobianos. Si se han administrado informar de ello al laboratorio. A menudo un LCR no revela patógenos bacterianos en frotis ni cultivo cuando se ha tomado un antibiótico en las 24 horas anteriores.
3.- Como la piel, el tracto intestinal, las mucosas, etc., tienen flora bacteriana normal, es necesario utilizar procedimientos especiales para distinguir agentes etiológicos y se recomienda los siguientes enfoques:
a.- Limpiar el área con desinfectante (70% de alcohol i 2% de Yodo en caso de preparación para cultivo de sangre) b.- Cultivar específicamente para microorganismos conocidos como agentes etiológicos (estreptococo grupo A en infecciones de la garganta) c.- Evitar áreas de la flora normal (usar aspiración suprapúbica para muestra de orina cuando se cultiva para anaerobios o aspiración transtraqueal en lugar de esputo) d.- Cuantificar los resultados del cultivo (cultivos cuantitativos de orina) Así mismo generalmente casi todas las muestras para cultivo bacteriano representan una de 3 áreas: 1.- áreas corporales profundas cerradas, 2.- áreas corporales profundas comunicantes, 3.- áreas superficiales del cuerpo.
A.- Las muestras de áreas profundas normalmente son estériles son las más satisfactorias (sangre circulante, pleura, peritoneo, articulaciones, etc.). Se necesita una cuidadosa preparación de la piel. B.- Las muestras de áreas profundas que comunican con la superficie (endocérvix, vejiga, fístulas) pueden estar contaminadas por flora normal. C.- Las muestras de áreas superficiales del cuerpo (piel mucosas son las más inseguras porque estos sitios están contaminados por la flora normal. Es necesario restringir la búsqueda a un agente etiológico específico (Salmonella, Shigella, en heces; Gonorrea en uretra).
4. Enviar las muestras lo antes posible al laboratorio, Neiseria Meningitidis es muy sensible a los cambios de temperatura i por ello el LCR debe entregarse todavía caliente.
Sino puede cultivarse inmediatamente, incubar a 37(C. Las muestras para el cultivo de Gonorrea deben llevarse a placa en la cabecera del paciente o colocarse en un medio de transporte especial (Stuart) o indicar la asistencia del paciente al laboratorio, lo mismo debe decirse de los hisopos oculares.
5.- Tejido, entregar en frascos de boca ancha de cierre a rosca o en recipiente de plástico estéril i seco, sin agregar agua ni solución fisiológica. Despachar sin tardanza. Es evidente que no debe agregarse formol.
6.- Usar recipientes estériles sin medio de transporte ni preservativos para la recolección de orina, esputo y LCR. Recoger heces en una chata estéril i colocar una porción apropiada en un frasco en rosca para su entrega inmediata en laboratorio. Si las heces no pueden procesarse inmediatamente debe colocarse en un medio de transporte o en una solución preservativa. El esputo debe recogerse en un frasco a rosca de vidrio estéril o en recipientes descartables de plástico estériles.
7. Para materiales de garganta, nariz, ojos, oídos, heridas, abscesos i rectos usar hisopos (dacron). Algunos recomiendan colocar los aplicadores de algodón inoculados en un tubo que contiene algunas gotas de caldo de infusión para evitar el resecamiento del hisopo, otros se oponen con razón al caldo porque puede dar lugar a la multiplicación de las bacterias con los contaminantes en el crecimiento mayor que los microorganismos significativos, durante periodos brees es preferible usar algunas gotas de suero fisiológico estéril para evitar el resecamiento.
COMO REGLA GENERAL EL MATERIAL CLÕNICO DEBE CULTIVARSE INMEDIATAMENTE PUES MUCHOS ANAEROBIOS MUEREN MUY RAPIDAMENTE POR EXPOSICIÓN AL OXIGENO. USAR MATERIAL ASPIRADO EN LUGAR DE HISOPOS SIEMPRE QUE SEA POSIBLE.
8.- Para obtener muestras nasofaríngeas es recomendable usar hisopos nasofaríngeos flexibles.
9.- La sangre debe recogerse en frascos estériles que contienen caldo o, en tubos estériles, pero como la muestra se coagula r·pidamente es preferible usar tubos con anticoagulante no bactericida.
10.- Demora entre recolección de cultivo, muchos medios de transporte existen para prolongar la supervivencia de los microorganismos. Si se espera una demora apreciable deben colocarse hisopos en las ampollas con medios de transporte.